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PubMedFévrier 2027

Métabarcoding nanopore à lecture longue pour une caractérisation complète des nématodes parasites chez l'homme et l'animal : une étude de développement et de validation diagnostique.

Nanopore long-read metabarcoding for comprehensive characterisation of parasitic nematodes in humans and animals: a development and diagnostic validation study.

Huggins LG, Young ND, Zendejas-Heredia PA, Hii SF, Vaz Nery S, Gasser RB, Colella V.
Lancet Microbe
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Résumé

Les nématodes parasites des vertébrés imposent un fardeau considérable à la santé humaine et animale ; cependant, les outils de diagnostic avancés permettant de caractériser avec précision ces parasites sont rares. Une approche prometteuse mais naissante est le métabarcoding, qui permet la caractérisation simultanée de tous les nématodes parasites dans un échantillon, appelé nemabiome. Cependant, les versions antérieures de cette approche n’ont pas permis de détecter des nématodes d’importance socio-économique tels que ceux des genres Strongyloides et Trichuris. Par conséquent, nous avons cherché à développer une nouvelle méthode de nemabiome capable de détecter tous les nématodes parasites afin de soutenir leur contrôle précis chez les humains et les animaux. Dans cette étude de développement et de validation diagnostique, nous avons utilisé une approche comparative de cibles moléculaires pour identifier les gènes de codes-barres optimaux afin de créer un nouveau test de nemabiome capable de détecter tous les nématodes parasites infectant les vertébrés dans un échantillon. L'ADN utilisé pour développer le test a été extrait de 154 échantillons de contrôle positif provenant de dix pays différents. Pour la validation du diagnostic, des échantillons ont été choisis dans une biobanque d'échantillons de terrain collectés dans le cadre de deux projets en Asie-Pacifique, en particulier 190 échantillons fécaux humains (n ​​= 95, collectés au Vanuatu) et canins (n ​​= 95, collectés au Cambodge). Nous avons exploité les capacités de séquençage à lecture longue de la plateforme Oxford Nanopore Technologies pour garantir une résolution taxonomique élevée. Les performances diagnostiques du test ont été comparées à celles de tests PCR quantitatifs (qPCR) bien établis, en utilisant la statistique kappa (κ) de Cohen et l'évaluation des valeurs de sensibilité et de spécificité diagnostiques. Nous avons identifié des gènes de codes-barres appropriés pour les espèces de nématodes dans les clades I et IV (ADN ribosomal 18S) et les clades III et V (espaceurs transcrits internes). La validation à l'aide de contrôles positifs a confirmé la capacité du test à détecter des parasites représentant 24 genres différents dans tous les clades de nématodes parasites. Grâce à des tests sur des échantillons de terrain, le test nemabiome a identifié 72 chiens positifs aux nématodes parasites (76 %) et 57 personnes positives (60 %), y compris des taxons zoonotiques identifiés chez les deux hôtes. L'analyse comparative utilisant des échantillons de terrain a montré une spécificité diagnostique de 99,6 % (IC à 95 % 98,8-99,9) et une sensibilité diagnostique de 86,0 % (81,4-89,9), avec une concordance diagnostique classée comme substantielle (κ≥0,69) ou élevée (κ≥0,81) entre le test du nemabiome et la qPCR pour des parasites comparables. De plus, l’analyse du nemabiome a révélé une plus grande diversité d’espèces de nématodes parasites (n = 11) que celles détectées par les techniques moléculaires conventionnelles. Ce test du némabiome offre une approche globale pour la caractérisation précise des communautés parasitaires (co-infections) affectant les humains et les vertébrés. Contrairement aux méthodes moléculaires spécifiques à une cible, telles que la qPCR, notre approche facilite la détection de parasites jusqu’alors non identifiés, notamment les espèces zoonotiques et cryptiques, et élucide également les voies de transmission entre hôtes et les réservoirs animaux. L’utilisation de cette méthode avancée sur des espèces hôtes et des emplacements supplémentaires pourrait renforcer les programmes de contrôle des parasites, y compris la gestion des menaces parasitaires émergentes et réémergentes. L'Université de Melbourne, le Conseil national de la santé et de la recherche médicale et Bridges to Development.

Abstract (English)

Parasitic nematodes of vertebrates impose a substantial burden on human and animal health; however, advanced diagnostic tools for the accurate characterisation of these parasites are scarce. One promising but nascent approach is metabarcoding, which enables the simultaneous characterisation of all parasitic nematodes in a sample, termed the nemabiome. However, earlier iterations of this approach could not detect socioeconomically important nematodes such as those in the genera Strongyloides and Trichuris. Therefore, we aimed to develop a novel nemabiome method capable of detecting all parasitic nematodes to support their accurate control in people and animals. In this development and diagnostic validation study, we used a comparative molecular target approach to identify optimal barcoding genes to create a novel nemabiome assay capable of detecting all vertebrate-infecting parasitic nematodes in a sample. DNA for developing the assay was extracted from 154 positive control samples sourced from ten different countries. For diagnostic validation, samples were chosen from a biobank of field samples collected as part of two projects in the Asia-Pacific, specifically 190 human (n=95, collected from Vanuatu) and canine (n=95, collected from Cambodia) faecal samples were used. We leveraged the long-read sequencing capabilities of the Oxford Nanopore Technologies platform to ensure high taxonomic resolution. The diagnostic performance of the assay was benchmarked against that of well-established quantitative PCR (qPCR) assays, using Cohen's kappa (κ) statistic and assessment of diagnostic sensitivity and specificity values. We identified suitable barcoding genes for nematode species in clades I and IV (18S ribosomal DNA) and clades III and V (internal transcribed spacers). Validation using positive controls confirmed the assay's ability to detect parasites representing 24 different genera across all parasitic nematode clades. Through testing on field samples, the nemabiome assay identified 72 parasitic nematode-positive dogs (76%) and 57 positive people (60%), including zoonotic taxa identified in both hosts. Benchmarking using field samples showed a diagnostic specificity of 99·6% (95% CI 98·8-99·9) and diagnostic sensitivity of 86·0% (81·4-89·9), with diagnostic agreement categorised as substantial (κ≥0·69) or high (κ≥0·81) between the nemabiome assay and qPCR for comparable parasites. Moreover, the nemabiome assay revealed a greater diversity of parasitic nematode species (n=11) than those detected by conventional molecular techniques. This nemabiome assay offers a comprehensive approach for the precise characterisation of parasite communities (co-infections) affecting humans and vertebrates. Unlike target-specific molecular methods, such as qPCR, our approach facilitates the detection of previously unidentified parasites, including zoonotic and cryptic species, and also elucidates interhost transmission pathways and animal reservoirs. Using this advanced method in additional host species and locations could strengthen parasite control programmes, including the management of emerging and re-emerging parasitic threats. The University of Melbourne, National Health and Medical Research Council, and Bridges to Development.

Informations

Identifiant
42140213
Source
PubMed
Journal
Lancet Microbe
Date
Février 2027
Auteurs
Huggins LG, Young ND, Zendejas-Heredia PA, Hii SF, Vaz Nery S, Gasser RB, Colella V.

Produit associé

Protéines ribosomales S6 Anticorps polyclonal
Produit

Protéines ribosomales S6 Anticorps polyclonal

Ribosomal Protein S6 Polyclonal Antibody